La tasa de enfriamiento en la criopreservación impacta la motilidad y supervivencia del esperma post-descongelación en
Autores: Hobbs, Rebecca J.; Upton, Rose; Calatayud, Natalie E.; Silla, Aimee J.; Daly, Jonathan; McFadden, Michael S.; O"Brien, Justine K.
Idioma: Inglés
Editor: MDPI
Año: 2023
Acceso abierto
Artículo científico
2023
La tasa de enfriamiento en la criopreservación impacta la motilidad y supervivencia del esperma post-descongelación en
Categoría
Ciencias Agrícolas y Biológicas
Subcategoría
Zootecnia
Palabras clave
Criopreservación
Gametos
Programas de cría de conservación
Esperma
Crioprotector
Viabilidad
Licencia
CC BY-SA – Atribución – Compartir Igual
Consultas: 9
Citaciones: Sin citaciones
La criopreservación y almacenamiento de gametos (biobanco) pueden proporcionar una opción a largo plazo y de bajo costo para la preservación de la diversidad genética de la población y es particularmente impactante cuando se aplica para gestionar la cría selectiva dentro de los programas de cría en conservación (CBPs). Este estudio tuvo como objetivo desarrollar un protocolo de criopreservación de esperma para la rana Booroolong, en peligro crítico de extinción, para capturar la genética fundadora dentro del CBP recientemente establecido (est. 2019) para esta especie. Se logró la liberación de esperma inducida por hormonas utilizando protocolos establecidos, y se recolectaron muestras de orina espermática durante un período de 6 horas. Las muestras de orina espermática agrupadas (n = 3 machos) se dividieron equitativamente entre dos tratamientos de crioprotectores (CPA) y se diluyeron en una proporción de 1:5 (espermatozoides:CPA) con 15% (v/v) de dimetilsulfóxido + 1% (v/v) de sacarosa en Ringer simplificado para anfibios (SAR; CPAA) o 10% (v/v) de dimetilformamida + 10% (v/v) de trehalosa dihidratada en SAR (CPAB). Las muestras se criopreservaron en pajillas de 0.25 mL utilizando un congelador programable (FrA) o un método de transportador seco adaptado (FrB). Las muestras descongeladas se activaron mediante dilución en agua y se evaluaron por viabilidad y motilidad utilizando tanto la evaluación manual como el análisis de esperma asistido por computadora (CASA; 0 h, 0.5 h post-descongelación). Tras la activación, la supervivencia y recuperación de la motilidad (motilidad total, progresión hacia adelante y velocidad) de las suspensiones de esperma criopreservadas fueron mayores para el esperma preservado utilizando FrB que FrA, independientemente de la composición del CPA. Este trabajo apoya nuestro objetivo a largo plazo de ser pioneros en la integración de esperma criopreservado biobancado con la gestión genética de poblaciones para maximizar los resultados de los programas de restauración para especies de anfibios australianos.
Descripción
La criopreservación y almacenamiento de gametos (biobanco) pueden proporcionar una opción a largo plazo y de bajo costo para la preservación de la diversidad genética de la población y es particularmente impactante cuando se aplica para gestionar la cría selectiva dentro de los programas de cría en conservación (CBPs). Este estudio tuvo como objetivo desarrollar un protocolo de criopreservación de esperma para la rana Booroolong, en peligro crítico de extinción, para capturar la genética fundadora dentro del CBP recientemente establecido (est. 2019) para esta especie. Se logró la liberación de esperma inducida por hormonas utilizando protocolos establecidos, y se recolectaron muestras de orina espermática durante un período de 6 horas. Las muestras de orina espermática agrupadas (n = 3 machos) se dividieron equitativamente entre dos tratamientos de crioprotectores (CPA) y se diluyeron en una proporción de 1:5 (espermatozoides:CPA) con 15% (v/v) de dimetilsulfóxido + 1% (v/v) de sacarosa en Ringer simplificado para anfibios (SAR; CPAA) o 10% (v/v) de dimetilformamida + 10% (v/v) de trehalosa dihidratada en SAR (CPAB). Las muestras se criopreservaron en pajillas de 0.25 mL utilizando un congelador programable (FrA) o un método de transportador seco adaptado (FrB). Las muestras descongeladas se activaron mediante dilución en agua y se evaluaron por viabilidad y motilidad utilizando tanto la evaluación manual como el análisis de esperma asistido por computadora (CASA; 0 h, 0.5 h post-descongelación). Tras la activación, la supervivencia y recuperación de la motilidad (motilidad total, progresión hacia adelante y velocidad) de las suspensiones de esperma criopreservadas fueron mayores para el esperma preservado utilizando FrB que FrA, independientemente de la composición del CPA. Este trabajo apoya nuestro objetivo a largo plazo de ser pioneros en la integración de esperma criopreservado biobancado con la gestión genética de poblaciones para maximizar los resultados de los programas de restauración para especies de anfibios australianos.