La única opción de preservación de la fertilidad y restauración posterior para muchos pacientes que enfrentan tratamientos gonadotóxicos es la criopreservación y trasplante de tejido ovárico. Mientras que este proceso es exitoso para algunos, hay un amplio margen de mejora para extender la vida del trasplante y hacerlo seguro para pacientes que puedan tener enfermedad metastásica dentro de su tejido ovárico. Necesitamos una comprensión más profunda de cómo las propiedades físicas del microambiente ovárico pueden afectar la foliculogénesis para diseñar un entorno que apoye a los folículos aislados y mantenga la quiescencia de los folículos primordiales. Los ovarios bovinos se utilizaron aquí como un modelo monovulatorio de foliculogénesis para examinar los efectos de la activación y crecimiento de los folículos primordiales bajo diferentes condiciones físicas. Encontramos que no hubo diferencias en la activación, crecimiento o supervivencia cuando los folículos primordiales fueron cultivados de forma aislada o in situ (permaneciendo en el tejido) bajo dos geles de alginato significativamente diferentes en rigidez. Para determinar si el entorno extra rígido no afectaba la activación en los folículos aislados debido a un evento de activación inmediato, utilizamos 5-etinil-2-deoxiuridina (EdU) para rastrear la activación de los folículos durante el proceso de aislamiento. Identificamos la incorporación de EdU en las células de la granulosa después de que los folículos primordiales fueron aislados de la matriz extracelular circundante (ECM). Estos hallazgos respaldan que el aislamiento de los folículos primordiales de la ECM es un evento activador y que los entornos diferencialmente rígidos evaluados aquí no tuvieron efecto en el crecimiento de los folículos. Se necesita más trabajo para suprimir la activación en los folículos primordiales para mantener la reserva ovárica y extender la vida de un trasplante de tejido ovárico.